jeremychen
💎💎🏆🏆🏆
很可惜去年大量作藍寶螯合銅實驗時,倒吊當時不是我主要的目標魚所以沒有收集很多魚種,我印象中當時有假澄波,紋倒吊....這兩種倒吊,假澄波幾乎怎樣都死不了,而紋倒吊則是怎樣都養不活@@,我相信這同時也是大家的經驗,這跟有沒有使用銅藥我覺的是沒多大關連的.....但是有一點是我長期的觀察,就是倒吊對銅離子的敏感度比較高,比方說直接噴全劑量的藥劑下去,多數魚都無異狀(小魚例外),倒吊可能就會有短暫的暴衝或者呼吸急促的行為....
化學大師小益之前曾經分享過銅離子結晶這種化學現象(也可以說沉澱),但事實上這種現象只有在硫酸銅才有可能發生,理論上來說螯合銅不大可能會沉澱,在沒有生物吸收或者蛋白打出去的情況下...螯合銅離子是會累積的,但養殖環境是非常複雜的,許多也是靠我大量實驗才發現的...以下就藍寶螯合銅的實際應用特性說明一下....而硫酸銅我從沒用過無法了解太多特性,唯一知道的事情就是硫酸銅比螯合銅殺蟲性能強,但對魚的毒性也相對增加,目前大多是用檸檬酸銅來減低毒性.
所有型式的銅離子初期都不溶易累積濃度,加藥後都會迅速降低濃度,一開始我們都以為是沉澱或者有機物的影響,但小益作過碳酸氫納實驗,而我是作有機物吸附實驗,意外發現這兩者皆不是主要原因,那麼銅離子是怎樣快速的在水中消失?我透過之前的實驗紀錄作出大膽的假設,是被細菌吸收的...銅離子也是細胞構成物質,然而我在加糖實驗中發現螯合銅離子在這種環境下都會大量損失,但在不加糖的環境中就稍微容易累積銅離子濃度(但初期還是困難的),所以初次下藥期間,銅離子主要是被細菌吸收...而螯合銅蛋白多少也能打出去一點,因為EDTA本身也有介面活性.
透過銅離子測試劑監測大概連續加藥幾天後螯合銅就會開始累積,累積上去之後即使不加藥銅離子也不大會變動,我曾實驗過當螯合銅離子進入穩定期後約1.5ppm的濃度(硫酸銅絕對不能拉升到這麼高的濃度,毒性會很強),放魚進去居然也沒怎樣,不管新魚舊魚都看不出有明顯刺激性的問題,但小魚卻會在銅離子很低的情況下,加藥後(一次性噴入0.3ppm)馬上出事?原因我也不解,也是當時才推出改良型的滴流加藥法來避免這種問題.
一種藥用的順的時後,一般人大多是不會想換藥,如果用的不順我會推薦孔雀綠,效果迅速同時也感覺不出來有刺激性的問題,但孔雀綠在軟體缸環境或者有大量活砂活石藻類的環境下效果一樣會大打折扣,該如何增加劑量則需要靠大家研究了,因為我無此環境研究,我全是FO缸.
魚對銅藥的耐受性是經曝露後增加的,當然這種環境必須是非致死劑量,否則魚死了怎還能耐藥?每種藥都有不同的性能與優缺點,平常就需要作功課,免得一出問題時手忙腳亂的把魚搞死了@@.
化學大師小益之前曾經分享過銅離子結晶這種化學現象(也可以說沉澱),但事實上這種現象只有在硫酸銅才有可能發生,理論上來說螯合銅不大可能會沉澱,在沒有生物吸收或者蛋白打出去的情況下...螯合銅離子是會累積的,但養殖環境是非常複雜的,許多也是靠我大量實驗才發現的...以下就藍寶螯合銅的實際應用特性說明一下....而硫酸銅我從沒用過無法了解太多特性,唯一知道的事情就是硫酸銅比螯合銅殺蟲性能強,但對魚的毒性也相對增加,目前大多是用檸檬酸銅來減低毒性.
所有型式的銅離子初期都不溶易累積濃度,加藥後都會迅速降低濃度,一開始我們都以為是沉澱或者有機物的影響,但小益作過碳酸氫納實驗,而我是作有機物吸附實驗,意外發現這兩者皆不是主要原因,那麼銅離子是怎樣快速的在水中消失?我透過之前的實驗紀錄作出大膽的假設,是被細菌吸收的...銅離子也是細胞構成物質,然而我在加糖實驗中發現螯合銅離子在這種環境下都會大量損失,但在不加糖的環境中就稍微容易累積銅離子濃度(但初期還是困難的),所以初次下藥期間,銅離子主要是被細菌吸收...而螯合銅蛋白多少也能打出去一點,因為EDTA本身也有介面活性.
透過銅離子測試劑監測大概連續加藥幾天後螯合銅就會開始累積,累積上去之後即使不加藥銅離子也不大會變動,我曾實驗過當螯合銅離子進入穩定期後約1.5ppm的濃度(硫酸銅絕對不能拉升到這麼高的濃度,毒性會很強),放魚進去居然也沒怎樣,不管新魚舊魚都看不出有明顯刺激性的問題,但小魚卻會在銅離子很低的情況下,加藥後(一次性噴入0.3ppm)馬上出事?原因我也不解,也是當時才推出改良型的滴流加藥法來避免這種問題.
一種藥用的順的時後,一般人大多是不會想換藥,如果用的不順我會推薦孔雀綠,效果迅速同時也感覺不出來有刺激性的問題,但孔雀綠在軟體缸環境或者有大量活砂活石藻類的環境下效果一樣會大打折扣,該如何增加劑量則需要靠大家研究了,因為我無此環境研究,我全是FO缸.
魚對銅藥的耐受性是經曝露後增加的,當然這種環境必須是非致死劑量,否則魚死了怎還能耐藥?每種藥都有不同的性能與優缺點,平常就需要作功課,免得一出問題時手忙腳亂的把魚搞死了@@.
